在细胞培养中，通过将培养基中的血清（FBS）浓度降低至0-1%，可以使细胞从“自助餐”模式切换到“轻断食”模式。这一过程中，培养基中的生长因子被去除，使得细胞会自然停留在G0/G1期，就像按下暂停键⏸️，这为后续实验提供了灵活性。

提高细胞同步性

经过12-24小时的饥饿处理，超过90%的细胞会同步停留在G0/G1期，从而避免不同细胞周期之间的不同步问题，这对于数据分析至关重要。当我们测定CyclinD1、p27等周期蛋白时，获得的条带清晰亮眼，数据表现得更为出色📈。

激活细胞凋亡与自噬

在研究细胞应激反应时，撤回血清能够迅速激活细胞的“自救模式”。Caspase-3水平的显著提升💥以及LC3-II斑点的急剧增加，为我们在研究抗癌药物或自噬诱导剂时提供了理想的实验模型。

提升转染效率

当细胞经历短暂的饥饿时，它们的代谢速度会减缓，因而更容易吸收外源的DNA和RNA。比如，经过一晚的饥饿处理，HEK293T细胞的转染效率从30%激增至80%，即使是难以处理的悬浮细胞也会显著提高转染率🤝。

清除信号通路背景

血清中的生长因子可能会“污染”信号通路的分析。通过在饥饿12小时后再添加EGF或胰岛素作为刺激，可以有效对比p-ERK与p-AKT的灰度值，体现出明显的变化🔍。

模拟体内微环境

对于肿瘤或干细胞的研究，低营养或低氧环境可以通过使用0.5%血清进行模拟。这样的处理方法可以准确复刻癌细胞的葡萄糖代谢及干细胞特性，为相关研究提供有力支持🔥。

操作步骤

1. 预处理：当细胞生长至70-80%融合时，使用PBS轻柔洗涤两次，以去除残留血清的“余味”🚿。
2. 饥饿处理：更换为0-1%血清的培养基，使贴壁细胞静置，同时降低悬浮细胞的转速以防沉淀🌀。
3. 唤醒细胞：实验前重新添加正常血清，细胞会迅速恢复到“满血复活”的状态，为后续的转染或药物添加做好准备⚡️。

在这一过程中，尊龙凯时作为细胞培养的优质选择，能够帮助科研人员更好地实现实验目标，从而推动生物医疗领域的进步。